动物科学实习报告(3篇)

报告怎么写

一、实习背景与目的 在动物科学的学术学习中，实践环节是不可或缺的一部分，它让我们有机会将理论知识应用到实际操作中，了解动物的生理特性、饲养管理及疾病防治等。本实习报告旨在记录我在xx动物园的实习经历，通过参与动物的日常护理、观察和研究，提升自身的专业技能和理论理解。

二、实习单位介绍 xx动物园是一家以保护和繁育稀有动物为主的机构，拥有丰富的动物种类和专业的饲养团队。在这里，我得以接触到多种不同类型的动物，包括哺乳类、鸟类、爬行类等。

三、实习内容与体验

1. 动物饲养管理：我参与了动物的喂食、清洁工作，了解了不同动物的饮食习惯和生活环境需求。

2. 动物行为观察：通过长时间观察，我记录了动物的日常行为模式，如繁殖、社交和觅食行为。

3. 健康监测：在兽医的指导下，我学会了如何进行基本的动物健康检查，如体温测量和粪便样本收集。

4. 疾病预防与治疗：了解了常见动物疾病的防治措施，参与了疫苗接种和疾病治疗过程。

四、遇到的问题与解决策略 在实习过程中，我遇到了动物行为解读的困难，通过查阅文献和请教导师，逐渐提高了这方面的能力。此外，我还学习了如何处理紧急情况，如动物受伤或突发疾病。

五、实习收获与反思 这次实习让我认识到动物科学不仅仅是理论研究，更需要实际操作和细心观察。我增强了对动物福利的理解，也提升了团队协作和问题解决能力。

第1篇 动物科学学院学生生产实习报告

崇左市宁明县水产畜牧局，该单位主要负责全县动物疫病防疫工作，包括动物免疫物资的采购、保管和发放，动物免疫工作的技术培训、指导、督办、检查，动物疫病监测、疫病普查、调查报告、疫情处置，制定并组织实施疫病防控措施等;负责畜禽品种资源开发、利用、改良和保护，组织开展动物疫病及寄生虫病调查、普查、预防，组织实施和管理全县畜禽产品产地、运输、屠宰环节的检疫工作。

我在去猪场实习的同时,还到当兽医站进行屠宰加工检疫.因为工作的特殊性质,每天都是凌晨进行,在这期间我都能准时到位上岗严格遵守检疫的工作守则,认真的做好每一项该做好的事.遇到不明白或不懂的,就向师傅虚心的请教,为能更好的掌握生猪的屠宰检疫技术.

生猪的屠宰检疫基本程序为头部、皮肤、内脏、胴体和旋毛虫检验五个环节。1、头部检验：头部检验分两步进行，第一步在放血后，烫毛前，用刀将杀口向下颌间隙扩大，在下颌骨支内侧长到左右颌下淋巴结，观察其状态及其周围组织有无胶样浸润，有无出血、化脓、结节等，主要检验炭疽、结核病及化脓性炎症;第二步检验在割头后，在左右侧下颌骨平行处切开咬肌，检查有无囊尾蚴寄生，然后检验咽喉黏膜、会厌软骨和扁桃体，主要检验猪瘟、猪肺疫。2、皮肤检验：猪在脱毛后开膛前，对带皮猪进行皮肤检验，主要观察皮肤的完整性和色泽的变化，注意耳根、四肢内处侧、胸腹部及背部等处有无点状、斑状、弥漫性发红和出血变化等。3、内脏检验：视检内脏形态、大小及色泽有无变化，有无出血、水肿、糜烂及溃疡等，触检其硬度、弹性及有无结节等变化。4、胴体检验：视检胴体色泽、浅血管内血液滞留情况、肌肉切口的湿润情况，以判定放血程度;然后仔细检查皮肤、皮下组织、肌肉、脂肪、腹膜、关节、筋腱、骨及骨髓等组织，观察有无出血、水肿、脓肿、蜂窝织炎及肿瘤等病变;剖检具有代表性的淋巴结，观察其有无充血、出血、水肿、坏死及化脓等变化。5、旋毛虫检验：主要是目检胴体两侧的横膈膜肌，表面有无针尖大半透明乳白色或灰白色隆起的小点，如发现有，再用显微镜进行压片镜检。经检验合格的胴体加盖验讫印章，在运输或销售前，再出具动物产品检疫合格证明。

在实习这段时间里,我学到了课本和课堂上学不到的知识，基本上掌握了生猪屠宰检疫的要点，认识其检疫的意义.这不但提高了我的专业知识水平，还锻炼了我的动手能力。本来我对猪只的各个部位和组织都不认识，经过实习，我熟悉了猪只各部位的构造，学会剖检各个淋巴结，这些实际操作是课本上学不到.眼下社会变革迅速，对人才的要求也越来越高，社会是在不断变化、发展的。所以我要用发展的眼光看问题，自身还有很多的缺点和不足，要适应社会的发展，还要不断提高思想认识，自我增值。

第2篇 猪场实习报告（动物科学专业实习报告）

在这三个月的实习过程中，我深深感觉到，自己在去年的实习中没有把基础的技能学好。量体温的操作不规范，稀释药物和抽药的水平不够专业，打针的速度太慢，打针的位置不太准确。

量体温时，先把体温计甩几下，让它在35°c一下，然后用酒精棉球擦一下，一是起到了消毒的作用，二是体温计湿润了，方便插进猪的肛门里。插体温计要旋转的插进去，这样会减少阻力，让猪觉得不是很疼。测体温的时间是3分钟，拔出体温计，用酒精棉球擦一下，然后读取温度所在的刻度。

去年的实习，一直以为只要把瓶中液体的药物抽完就可以了，忽略了细节。稀释青霉素，需要用复方氨基比林稀释，有时候用氯化钠生理盐水也可以的，但是不可以用葡萄糖注射液，虽然也有氯化钠，但是这样稀释了，会影响到药物的效果。将10毫升的氨基比林抽完，打到青霉素瓶，注射器不用拔出来，固定好，将瓶子来回的摇晃，等到瓶中看不到固体的青霉素粉末，说明已经稀释好了，抽的时候尽量不要来回的抽，这样会产生很多的泡沫。稀释速克（头孢噻呋），可以用黄芪多糖，也可以用生理盐水。速克的瓶子都是真空的，将稀释液打到瓶中，然后拔出，摇晃瓶子，使其溶解。先在注射器抽一些空气，然后将针头插到瓶子的凹口中，将空气打到瓶中，再抽药，抽到最后，将瓶子甩一下，使其中的药液全部汇集到一处再抽，这样抽的比较干净。

打针不够快、准。在刚开始的一段时间里，对于猪栏里乱跑的猪感到无从下手，总是跑来跑去，不好打，当时很讨厌打针，总是打不好，不想打。后来掌握了一些窍门和技巧，打的多了，熟练了。比如猪睡在靠近栏位旁边，可以在外面打，这样好打又省时间，如果进去打，没打好，猪跑来跑去，就有不必要的麻烦了。有时候猪在乱跑，你可以停一下，让它跑累了，自己就会停下来了，抓住时机，马上打，就省力多了。刚开始打针，知道该打在哪个部位，可是打了之后就看出有偏差了。正确的注射部位是在一个劲部等边三角形内，以大猪为例：三角形的底边于肩前2厘米，顶角距耳后2厘米，上边于劲韧带下，注射点最好在三角形中部。注射部位太高，腰围会注于劲韧带、脂肪层，吸收不良，药效较差；注射点太低，药液会注入腮腺、刺伤劲椎。注射点偏后会刺伤肩胛骨，不仅药效较差，还会产生炎症、肿胀。针打多了，还出现了一个问题，就是经常把针头给打弯了。虽然知道该怎么做，但是经常有没做到。在注射时将针头全部刺入猪体内，且用力向畜体方向推注射器，使针头底座与畜体紧靠，并使针管与猪体呈垂直，当猪骚动时猪体能带动针体与猪体同时向前移动，这样猪体内的针头和针管移动是同步的，针头就自然不会因猪体骚动而弯折。

我自己觉得，给猪看病是很重要的。现在的我，可以给猪看病了，看的是症状明显的，拐角的大猪，一般第一次打针使用青霉素+氨基比林，第二次可以增加地塞米松，还有可以加链霉素。脚肿的小猪，可以用头孢曲松、林可霉素。呼吸道疾病，可以用氟苯尼考、卡那霉素、卡那霉素+林可霉素、青霉素+卡那霉素。仔猪拉稀，可以用氧氟沙星，大一些的猪，则可以用乙酰甲喹，还有可以联合用药，乙酰甲喹+庆大霉素。皮肤出现烂皮的，可以使用青霉素+氨基比林、阿莫西林、头孢噻呋、多西环素。退烧的，可以使用安乃近、氨基比林。倒地不起的、四肢呈划水样的，疑是伪狂犬、副猪嗜血杆菌、脑炎，一般第一次使用磺胺间甲氧嘧啶，第二次可以使用头孢曲松或则青霉素。

在猪场还学到了赶猪的技巧，要学会用最小的力气把事情做好。猪赶到栏口的时候就是不下来，因为栏口与地面有一段的高度，猪不敢往下跳，必须要有人来赶一下，可以用木板往前一推，很省力，猪就下去了。对于不好赶的猪可以套头，只要把猪的尾巴对准出口，就省力多了，好赶多了。

在这段实习的时间里，老板经常有找我谈话的，告诉我一些猪场管理的方法，管理好猪场有四大因素：饲料、温度、湿度和空气。还有把专业知识的书——《科学养猪与猪病防制原色图谱》借给我看，让我多学点专业知识，这本书很好，内容很丰富，图片很漂亮。还有一本《羊皮卷》，主要写了一些做人的、为人处世的道理。我的师傅在忙完活之后，经常聊天的，聊到自己从事兽医这个职业有四十年了，有着丰富的专业知识，大大小小的病基本上都有能力可以把它治好。也有聊到过做人的道理，使我受益匪浅。师傅很耐心的教了我很多技能，很感谢师傅。

非常感谢猪场给我这个实习的机会，让我学到了很多技术，我会在以后的工作中学以致用的，努力学好技术，做好一位合格的兽医。

第3篇 3600字动物科学实习报告范文

3600字动物科学实习报告范文

实验项目

1、羊的体尺测量

2、鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数

3、鸡的屠宰测定和体内器官的观察

4、猪的精液品质检查

实验一：羊的体尺测量

实验目的：鉴别羊的生长发育速度和生产性能高低，往往要根据羊身体各部位的体尺来判断，测量项目的多少视测量的目的而定。

实验对象与材料：羊，皮尺

实验操作方法：

(1)体高 由看甲最高点至地面的垂直距离。

(2)体长 由肩端至坐骨结节后端的直线距离。

(3)胸围 由肩胛骨后缘绕胸1周的长度。

(4)胸深 由看甲最高点到胸骨底面的距离。

(5)胸宽 由肩胛骨后端的左右肋骨间的宽度。

(6)管围 由管骨上1／3处的周长。

实验结果：体高：53cm

体斜长：49cm

胸围：64cm

胸宽：13.9cm

胸深：24.5cm

管围：7.3cm

注意事项：测量时，场地要平坦，站立姿势要端正；因为羊的力气比较大，所以在测量各项指标时应该注意将羊保定，以防止伤害到同学。

实验二：鸡的体尺测量、本文由实习报告收集整理翅静脉采血、红细胞计数

1.鸡的体尺测量

实验目的：学会家禽体尺测量的方法。

实验对象与材料：鸡、皮尺、圆形测定器

实验操作方法：

体斜长：沿体表测量肩关节至坐骨结节间距离（厘米）

胸宽：测量两肩关节之间的体表距离（厘米）

胸深：第一胸椎到龙骨前缘的距离（厘米）

龙骨长：体表龙骨突前端到龙骨末端的距离（厘米）

胫长：从胫部上关节到第三、四间的直线距离（厘米）

实验结果：体斜长：21cm 胸宽：7.5cm 胸深：8.5cm 龙骨长：10.5cm 胫长：9.5cm

2.鸡翅静脉采血

实验目的：

为了了解鸡的正确的翅膀采血方法和操作技巧

实验对象与材料：鸡，针头，酒精，棉花

实验操作方法：

1.保定

2.在上鸡翅的骨间寻找血管

3.然后用酒精棉签檫拭消毒

4.下针，需慢抽并深度约为13针头

5.抽完血后需干棉签堵住伤口防止流血

3.红细胞计数

原理：一定量的血液经一定量等渗性稀释液稀释后，冲入血细胞计数池中显微镜下计数一定容积内的细胞，再换算成每升标本的细胞数报告。

实验试剂与材料： 1.红细胞稀释液，枸橼酸钠1.0 g，36%甲醛液 1.0 ml，

氯化钠 0.6 g，加蒸馏水至100 ml ,混匀、过滤两次后备用。

2. 其他 显微镜、改良neubauer血细胞计数板等。

实验操作方法：

1.取红细胞稀释液2.0ml，放入一小试管内。

2.用血红蛋白吸管吸血至10ul处。

3.擦去管尖外部余血将血液迅速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内，吸上清液漱洗吸管2-3次，摇匀。

4.用玻棒取悬混液少量，冲入计数池内。

5.待2-3分钟，让红细胞完全下沉后，将计数板放在显微镜台上，用低倍镜观察，如红细胞分布均匀即可换高倍镜进行计数。

红细胞技术区域：中心大方格中的5个中方格（正中一个和四角各一个）。

计数原则：数上不数下，数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线上的红细胞，只计上侧与左侧线上的细胞，而压在下侧与右侧线上的不计入。

实验结果：

计算：红细胞数/l=5个中方格内红细胞数÷100×1012

=158÷100×1012

=1.58×1012

注意事项

1.吸管、试管要注意清洁、干燥以防溶血，操作迅速避免血液凝固，如有血凝块应重新采血。

2.充液前，红细胞复液要充分摇匀，红细胞悬液注入计数池内要求分布均匀，不可有气泡，亦不可有多余液体外溢。