动物科学实习报告（三篇）

篇一 动物科学实习报告3700字

实验项目

1、羊的体尺测量

2、鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数

3、鸡的屠宰测定和体内器官的观察

4、猪的精液品质检查

实验一：羊的体尺测量

实验目的：鉴别羊的生长发育速度和生产性能高低，往往要根据羊身体各部位的体尺来判断，测量项目的多少视测量的目的而定。

实验对象与材料：羊，皮尺

实验操作方法：

(1)体高 由看甲点至地面的垂直距离。

(2)体长 由肩端至坐骨结节后端的直线距离。

(3)胸围 由肩胛骨后缘绕胸1周的长度。

(4)胸深 由看甲点到胸骨底面的距离。

(5)胸宽 由肩胛骨后端的左右肋骨间的宽度。

(6)管围 由管骨上1／3处的周长。

实验结果：体高：53cm

体斜长：49cm

胸围：64cm

胸宽：13.9cm

胸深：24.5cm

管围：7.3cm

注意事项：测量时，场地要平坦，站立姿势要端正；因为羊的力气比较大，所以在测量各项指标时应该注意将羊保定，以防止伤害到同学。

实验二：鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数

1.鸡的体尺测量

实验目的：学会家禽体尺测量的方法。

实验对象与材料：鸡、皮尺、圆形测定器

实验操作方法：

体斜长：沿体表测量肩关节至坐骨结节间距离（厘米）

胸宽：测量两肩关节之间的体表距离（厘米）

胸深：第一胸椎到龙骨前缘的距离（厘米）

龙骨长：体表龙骨突前端到龙骨末端的距离（厘米）

胫长：从胫部上关节到第三、四间的直线距离（厘米）

实验结果：体斜长：21cm 胸宽：7.5cm 胸深：8.5cm 龙骨长：10.5cm 胫长：9.5cm

2.鸡翅静脉采血

实验目的：

为了了解鸡的正确的翅膀采血方法和操作技巧

实验对象与材料：鸡，针头，酒精，棉花

实验操作方法：

1.保定

2.在上鸡翅的骨间寻找血管

3.然后用酒精棉签檫拭消毒

4.下针，需慢抽并深度约为13针头

5.抽完血后需干棉签堵住伤口防止流血

3.红细胞计数

原理：一定量的血液经一定量等渗性稀释液稀释后，冲入血细胞计数池中显微镜下计数一定容积内的细胞，再换算成每升标本的细胞数报告。

实验试剂与材料： 1.红细胞稀释液，枸橼酸钠1.0 g，36%甲醛液 1.0 ml，

氯化钠 0.6 g，加蒸馏水至100 ml ，混匀、过滤两次后备用。

2. 其他 显微镜、改良neubauer血细胞计数板等。

实验操作方法：

1.取红细胞稀释液2.0ml，放入一小试管内。

2.用血红蛋白吸管吸血至10ul处。

3.擦去管尖外部余血将血液迅速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内，吸上清液漱洗吸管2-3次，摇匀。

4.用玻棒取悬混液少量，冲入计数池内。

5.待2-3分钟，让红细胞完全下沉后，将计数板放在显微镜台上，用低倍镜观察，如红细胞分布均匀即可换高倍镜进行计数。

红细胞技术区域：中心大方格中的5个中方格（正中一个和四角各一个）。

计数原则：数上不数下，数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线上的红细胞，只计上侧与左侧线上的细胞，而压在下侧与右侧线上的不计入。

实验结果：

计算：红细胞数/l=5个中方格内红细胞数÷100×1012

=158÷100×1012

=1.58×1012

注意事项

1.吸管、试管要注意清洁、干燥以防溶血，操作迅速避免血液凝固，如有血凝块应重新采血。

2.充液前，红细胞复液要充分摇匀，红细胞悬液注入计数池内要求分布均匀，不可有气泡，亦不可有多余液体外溢。

实验三：鸡的屠宰测定和体内器官的观察

实验目的：

1、学习鸡屠宰方法和步骤，掌握屠宰率测定及计算方法。

2、了解鸡体内各器官的相互关系和解剖结构。

二、材料和用具

公、母鸡若干只、解剖刀、手术剪、镊子、解剖台、台秤、电子秤、温度计、瓷盘、骨剪、胸角器、游标卡尺、皮尺、粗天平、吊鸡架、承血盆。

实验操作和方法：

1、鸡的屠宰测定

（1）宰前的准备

①家禽屠宰前必须先禁食12-24h，只烘饮水，其目的既可节省饲料还可使放血完全，保证肉的品质优良和屠体美观。

②屠宰前为避免药物残留，应按规定程序停止在饲料中添加药物。

③称活体重。

（2）放血

①颈外放血法 左手握鸡两翅，将其颈向背部弯曲，并以左手拇指和食指固定其头，同时左手小指勾住鸡的一脚。右手将鸡耳下颈部宰杀部位的羽毛拔净后用刀切断颈动脉或颈静脉血管，放血致死。血放于承血盆中。

②口腔内放血法 将鸡两腿分开倒悬于吊鸡架上，左手握鸡头于手掌中并用拇指及食指将鸡嘴顶开，右手将解剖刀的刀背与舌面平等伸入口腔，待刀伸入至左耳部时将刀翻转使刀口朝下，用力切断颈静脉和桥形静脉联合处，然后再将刀抽出转向硬腭处中央裂缝中部（两眼间）斜刺延脑，破坏脑神经中枢。此法使屠体没有伤口，外表完整美观，放血完全，死亡快。

以上两种方法待血流尽后立刻称体重求得血重。此外，还有电刺法适用于火鸡、鹅等体重大的家禽。

（3）拔毛

①干拔法 应用口腔内放血宰杀的家禽可用干拔法，在血放尽后，将羽毛拔去。注意勿损伤皮肤。

②湿拔法 在血放净后，用50-80℃的热水浸烫，让热水渗进毛根，因毛囊周围骨肉的放松而便于拔毛。注意水温和浸烫时间要根据鸡体重的大小、季节差异和鸡的日龄而异，不宜太高温度和浸烫太久。一般以能拔下毛而不伤皮肤为准。拔毛顺序为：尾—翅—颈—胸—背—臀—两腿粗毛—绒毛。拔完羽毛后沥干水称屠体重并求毛重。

（4）屠体外观检查 检查屠体表面是否有病灶、损伤、淤血。如鸡痘、肿瘤、胸囊肿、胸骨弯曲、大小胸、脚趾瘤、外伤、断翅或淤血块等。

（5）分割、去内脏 割除头、颈、脚。脚从踝关节分割并剥去脚皮、趾壳，头从枕寰关节处割下，颈部从肩胛骨处割下。

为防止屠体污染，开腹前先挤压肛门，使粪便排出。在胸骨剑突与泄殖腔之间切一切，掏出内脏，仅留肺脏和肾脏。

2、泌尿生殖系统和消化系统的观察

（1）准备

①屠宰方法、屠体外观检查，同前述。

②切开胸侧壁与大腿间的皮肤，用力掰开髋关节，让其脱臼。这样屠体可稳定地呈仰卧姿势。

③在胸剑突下方横切一刀，切口伸向腹部两侧。再从切口下缘沿腹部中线纵向切开腹腔，露出腹腔脏器。

④从腹壁两侧，沿椎骨肋与胸骨肋结合的关节处，纵向向前剪开至肩关节处，再用骨剪剪断锁骨和乌喙骨。稍用力向上掀开整个胸壁，露出胸腔脏器。

（2）观察 先总体观察胸腔、腹腔各脏器位置，并观察气囊。

①生殖系统

母鸡观察：a.卵巢:识别卵泡、卵泡囊外的血管和卵泡带（破裂缝）以及排卵后的卵泡膜；b.输卵管：观察输卵管的漏斗部（伞部、腹腔口、颈部）膨大部（蛋白分泌部）、峡部、子宫部、阴道部和输卵管在泄殖腔的开口等部分的位置、形态及分界处。

公鸡生殖器官：睾丸、附睾和输精管的形态、位置（观察公鸡生殖器官司应在观察消化系统之后）。

②消化系统 首先摘除母鸡输卵管，然后剪开口腔，露出舌和上颌背侧前部硬腭中央的腭裂（位于相对于两眼位置，为斜刺延脑位置）。从上至下依次观察：口腔（喙、舌、咽）；

食管和嗉囊（鸭为纺锤形的食道膨大部）；腺胃（切开露腺胃_突起）；肌胃（切开露出角质膜）；小肠（十二指肠、空肠、回肠）以及胰腺、胆囊、肝脏；大肠（盲肠、直肠）以及盲肠扁桃体；泄殖腔。

③泌尿系统 摘除消化器官，露出紧贴于鸡腰部内侧的泌尿系统，包括肾脏、输尿管和泄殖腔。

④其他脏器 观察 心脏、肺脏、脾脏、法氏囊、胸腺、坐骨神经和卵黄柄等等。

实验四：猪的精液品质检查

精子活率检测及密度测定

实验目的：掌握检查精子密度、评定活率的方法；熟悉肉眼检查精液品质的方法；验证观察理化因素对精子运动及生存能力的影响。

实验材料

1．精液：猪新鲜精液20ml，牛、羊细管冻精各10只。

2．药品及作品：显微镜50台、载玻片60片、盖玻片2盒、搪瓷盘4个、温度计1只、擦镜纸1盒、纱布包、3%和0.9%氯化钠溶液、70%酒精，10ml试管10只、1ml移液器1支，100ul移液器4支、灭菌1ml和200ul枪头各1盒。

实验内容

（一）精液的肉眼观察

1．射精量

2．色泽、气味

3．云雾状的观察

（二）精子密度检查及活率评分

1．检查精子的密度

2．评定精子的活率

精子活动有三种类型：直线前进运动、旋转运动和原地摆动。评价精子活率是根据直线前进运动精子数的多少而定。

精子活率＝ ×100%

（三）死活精子百分率测定

活精子百分率＝ ×100%

实验结果：精子密度=5个中方格总精子数×5×10×1000×10倍

=237×5×10×1000×10

=1.185亿

精子活率=196÷237=82.7%

精子畸形率的测定

实验目的

掌握用血球计数板检查单位容积（毫升）中所含精子数的方法，以及测定精子畸形率的操作要点。

实验材料

1、材料：猪新鲜精液20ml，液氮保存的牛、羊细管冻精各10只。

2、器械及用品：显微镜50台、载玻片60块、盖玻片2盒、玻棒、0.9%nacl溶液、95%和75%的酒精、染色缸10个、洗瓶6个，3%nacl、红墨水二瓶、10ml试管10只、1ml移液器1支，100ul移液器4支、灭菌1ml和200ul枪头各1盒。

3、畸形精子形态图。

实验内容

测定精子畸形率

实验步骤：

1、以细玻璃棒蘸精液一滴，滴于载玻片上一端，如果是牛羊精液应再加1-2滴0.9%氯化钠溶液。

2、以另一载玻片的顶端呈35°角抵于精液滴上，并向另一端推去，将精液均匀涂抹于载玻片上。

3、将抹片放于空气中干燥。

4、用下列方法中的任一方法固定染色。

①用0.5%的龙胆紫酒精染色三分钟，水洗，待干后即可镜检（也可用由普通红蓝墨水代替）

②置95%酒精中（或5%福尔马林溶液）固定5-6分钟，取出以水冲洗后，凉干或烘干，用蓝、红墨水等染色3-5分钟，再用水冲洗，干燥后置于显微镜下检查。

5、镜检：将制好的抹片置于显微镜下，查数不同视野的500个精子，计算出其中所含畸形精子数，求出畸形百分率。

实验结果：精子畸形率=60÷500=12%

总结：

通过这次专业技能竞赛，我对所学的专业又加强巩固了一些，对此专业也更感兴趣。理论要用于实践，从实践中又能获得理论，所以，我希望学院能多开展这样的技能竞赛和实验。

篇二 3600字动物科学实习报告1250字

3600字动物科学实习报告范文

实验项目

1、羊的体尺测量

2、鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数

3、鸡的屠宰测定和体内器官的观察

4、猪的精液品质检查

实验一：羊的体尺测量

实验目的：鉴别羊的生长发育速度和生产性能高低，往往要根据羊身体各部位的体尺来判断，测量项目的多少视测量的目的而定。

实验对象与材料：羊，皮尺

实验操作方法：

(1)体高 由看甲最高点至地面的垂直距离。

(2)体长 由肩端至坐骨结节后端的直线距离。

(3)胸围 由肩胛骨后缘绕胸1周的长度。

(4)胸深 由看甲最高点到胸骨底面的距离。

(5)胸宽 由肩胛骨后端的左右肋骨间的宽度。

(6)管围 由管骨上1／3处的周长。

实验结果：体高：53cm

体斜长：49cm

胸围：64cm

胸宽：13.9cm

胸深：24.5cm

管围：7.3cm

注意事项：测量时，场地要平坦，站立姿势要端正；因为羊的力气比较大，所以在测量各项指标时应该注意将羊保定，以防止伤害到同学。

实验二：鸡的体尺测量、本文由实习报告收集整理翅静脉采血、红细胞计数

1.鸡的体尺测量

实验目的：学会家禽体尺测量的方法。

实验对象与材料：鸡、皮尺、圆形测定器

实验操作方法：

体斜长：沿体表测量肩关节至坐骨结节间距离（厘米）

胸宽：测量两肩关节之间的体表距离（厘米）

胸深：第一胸椎到龙骨前缘的距离（厘米）

龙骨长：体表龙骨突前端到龙骨末端的距离（厘米）

胫长：从胫部上关节到第三、四间的直线距离（厘米）

实验结果：体斜长：21cm 胸宽：7.5cm 胸深：8.5cm 龙骨长：10.5cm 胫长：9.5cm

2.鸡翅静脉采血

实验目的：

为了了解鸡的正确的翅膀采血方法和操作技巧

实验对象与材料：鸡，针头，酒精，棉花

实验操作方法：

1.保定

2.在上鸡翅的骨间寻找血管

3.然后用酒精棉签檫拭消毒

4.下针，需慢抽并深度约为13针头

5.抽完血后需干棉签堵住伤口防止流血

3.红细胞计数

原理：一定量的血液经一定量等渗性稀释液稀释后，冲入血细胞计数池中显微镜下计数一定容积内的细胞，再换算成每升标本的细胞数报告。

实验试剂与材料： 1.红细胞稀释液，枸橼酸钠1.0 g，36%甲醛液 1.0 ml，

氯化钠 0.6 g，加蒸馏水至100 ml ，混匀、过滤两次后备用。

2. 其他 显微镜、改良neubauer血细胞计数板等。

实验操作方法：

1.取红细胞稀释液2.0ml，放入一小试管内。

2.用血红蛋白吸管吸血至10ul处。

3.擦去管尖外部余血将血液迅速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内，吸上清液漱洗吸管2-3次，摇匀。

4.用玻棒取悬混液少量，冲入计数池内。

5.待2-3分钟，让红细胞完全下沉后，将计数板放在显微镜台上，用低倍镜观察，如红细胞分布均匀即可换高倍镜进行计数。

红细胞技术区域：中心大方格中的5个中方格（正中一个和四角各一个）。

计数原则：数上不数下，数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线上的红细胞，只计上侧与左侧线上的细胞，而压在下侧与右侧线上的不计入。

实验结果：

计算：红细胞数/l=5个中方格内红细胞数÷100×1012

=158÷100×1012

=1.58×1012

注意事项

1.吸管、试管要注意清洁、干燥以防溶血，操作迅速避免血液凝固，如有血凝块应重新采血。

2.充液前，红细胞复液要充分摇匀，红细胞悬液注入计数池内要求分布均匀，不可有气泡，亦不可有多余液体外溢。

篇三 猪场实习报告动物科学专业实习报告1800字

在这三个月的实习过程中，我深深感觉到，自己在去年的实习中没有把基础的技能学好。量体温的操作不规范，稀释药物和抽药的水平不够专业，打针的速度太慢，打针的位置不太准确。

量体温时，先把体温计甩几下，让它在35°c一下，然后用酒精棉球擦一下，一是起到了消毒的作用，二是体温计湿润了，方便插进猪的肛门里。插体温计要旋转的插进去，这样会减少阻力，让猪觉得不是很疼。测体温的时间是3分钟，拔出体温计，用酒精棉球擦一下，然后读取温度所在的刻度。

去年的实习，一直以为只要把瓶中液体的药物抽完就可以了，忽略了细节。稀释青霉素，需要用复方氨基比林稀释，有时候用氯化钠生理盐水也可以的，但是不可以用葡萄糖注射液，虽然也有氯化钠，但是这样稀释了，会影响到药物的效果。将10毫升的氨基比林抽完，打到青霉素瓶，注射器不用拔出来，固定好，将瓶子来回的摇晃，等到瓶中看不到固体的青霉素粉末，说明已经稀释好了，抽的时候尽量不要来回的抽，这样会产生很多的泡沫。稀释速克（头孢噻呋），可以用黄芪多糖，也可以用生理盐水。速克的瓶子都是真空的，将稀释液打到瓶中，然后拔出，摇晃瓶子，使其溶解。先在注射器抽一些空气，然后将针头插到瓶子的凹口中，将空气打到瓶中，再抽药，抽到最后，将瓶子甩一下，使其中的药液全部汇集到一处再抽，这样抽的比较干净。

打针不够快、准。在刚开始的一段时间里，对于猪栏里乱跑的猪感到无从下手，总是跑来跑去，不好打，当时很讨厌打针，总是打不好，不想打。后来掌握了一些窍门和技巧，打的多了，熟练了。比如猪睡在靠近栏位旁边，可以在外面打，这样好打又省时间，如果进去打，没打好，猪跑来跑去，就有不必要的麻烦了。有时候猪在乱跑，你可以停一下，让它跑累了，自己就会停下来了，抓住时机，马上打，就省力多了。刚开始打针，知道该打在哪个部位，可是打了之后就看出有偏差了。正确的注射部位是在一个劲部等边三角形内，以大猪为例：三角形的底边于肩前2厘米，顶角距耳后2厘米，上边于劲韧带下，注射点最好在三角形中部。注射部位太高，腰围会注于劲韧带、脂肪层，吸收不良，药效较差；注射点太低，药液会注入腮腺、刺伤劲椎。注射点偏后会刺伤肩胛骨，不仅药效较差，还会产生炎症、肿胀。针打多了，还出现了一个问题，就是经常把针头给打弯了。虽然知道该怎么做，但是经常有没做到。在注射时将针头全部刺入猪体内，且用力向畜体方向推注射器，使针头底座与畜体紧靠，并使针管与猪体呈垂直，当猪骚动时猪体能带动针体与猪体同时向前移动，这样猪体内的针头和针管移动是同步的，针头就自然不会因猪体骚动而弯折。

我自己觉得，给猪看病是很重要的。现在的我，可以给猪看病了，看的是症状明显的，拐角的大猪，一般第一次打针使用青霉素+氨基比林，第二次可以增加地塞米松，还有可以加链霉素。脚肿的小猪，可以用头孢曲松、林可霉素。呼吸道疾病，可以用氟苯尼考、卡那霉素、卡那霉素+林可霉素、青霉素+卡那霉素。仔猪拉稀，可以用氧氟沙星，大一些的猪，则可以用乙酰甲喹，还有可以联合用药，乙酰甲喹+庆大霉素。皮肤出现烂皮的，可以使用青霉素+氨基比林、阿莫西林、头孢噻呋、多西环素。退烧的，可以使用安乃近、氨基比林。倒地不起的、四肢呈划水样的，疑是伪狂犬、副猪嗜血杆菌、脑炎，一般第一次使用磺胺间甲氧嘧啶，第二次可以使用头孢曲松或则青霉素。

在猪场还学到了赶猪的技巧，要学会用最小的力气把事情做好。猪赶到栏口的时候就是不下来，因为栏口与地面有一段的高度，猪不敢往下跳，必须要有人来赶一下，可以用木板往前一推，很省力，猪就下去了。对于不好赶的猪可以套头，只要把猪的尾巴对准出口，就省力多了，好赶多了。

在这段实习的时间里，老板经常有找我谈话的，告诉我一些猪场管理的方法，管理好猪场有四大因素：饲料、温度、湿度和空气。还有把专业知识的书——《科学养猪与猪病防制原色图谱》借给我看，让我多学点专业知识，这本书很好，内容很丰富，图片很漂亮。还有一本《羊皮卷》，主要写了一些做人的、为人处世的道理。我的师傅在忙完活之后，经常聊天的，聊到自己从事兽医这个职业有四十年了，有着丰富的专业知识，大大小小的病基本上都有能力可以把它治好。也有聊到过做人的道理，使我受益匪浅。师傅很耐心的教了我很多技能，很感谢师傅。

非常感谢猪场给我这个实习的机会，让我学到了很多技术，我会在以后的工作中学以致用的，努力学好技术，做好一位合格的兽医。